实验中细胞培养中污染的特点
污染是细胞培养的大敌。预防和避免污染是细胞培养成功的关键之一。一开始就要十分重视，防止污染，否则会前功尽弃，不仅浪费时间，而且浪费人力、物力，甚至造成无法弥补的损失。 细胞培养中常见的生物污染类型有7种，分别是细菌污染、支原体污染、原虫污染、黑胶虫污染、真菌污染、病毒污染以及非细胞污染。他们在细胞培养中污染的特点如下：&1、细菌：细菌在普通倒置显微镜下为黑色细沙状，根据感染细菌的不同，可有不同的外形，培养液一般会浑浊变黄，对细胞生长影响明显。 &&2、支原体：黑色的，好象多为多形，培养液一般培养液一般会浑浊，原体感染，国内血清很多都没有做支原体阴性检测，而支原体是牛血清中最常见的微生物之一。而且它不能用过滤的办法除去。支原体感染细胞以后，细胞病变不很明显，只是慢慢死去。3、黑胶虫：可以穿透滤膜，也可以通过空气传播，低倍下为黑色点状，高倍下可看见黑色的小虫游来游去，培养液也是不浑的，一般不会太影响，细胞还是可以用的。常常是细胞生长状态良好，且观测到的运动物无明显增多，且培养液颜色、透明度无明显变化，可在同一批号的血清养的细胞中发现类似现象。对细胞生长状态不会有明显影响，在细胞增殖旺盛之后会自然消失，除更换血清外无须特殊处理。4、真菌：一般培养液清亮，不变色，镜下有丝状物，有些真菌开始很像死细胞碎片，只是它很多很多的小块很清楚，象珊瑚状，不象细胞碎片分不清，慢慢的会长出很细的黑色丝状物。真菌生长的比较慢，不象细菌那么容易被发现，但是一旦发现有它的存在细胞就被污染了，也很难救活了。5、原虫：培养液可轻微浑浊，显微镜下那些细小的点状物数量非常多，轻微活动，细胞虽然可以生长但繁殖速度却明显减慢，而且细胞状态不好，边缘不清楚，细胞不透亮。他们与细胞可共生但会与细胞争夺营养。这种共生是非常普遍的，但他们的数量小，细胞站优势所以不会影响到细胞的正常生长，只有当他们到达一定的数量时就会影响到细胞的生长，最终形成恶性循环。6. 病毒：组织细胞培养过程中，如果没有除去潜在的病毒，就会产生病毒污染。目前，从原代猴肾细胞的培养中已发现不少于20种血清性病毒。 尽管病毒污染的细胞不影响原代培养，但生产疫苗是不安全的。因此，潜在病毒是细胞大量生产和疫苗、干扰素等生物制品制作中的难题7、非同种细胞污染 ：即是细胞交叉污染，由于细胞培养操作时各细胞株所需的器材和溶液没有严格分开，往往会使一种细胞被另一种细胞污染。目前，世界上已有几十种细胞都被HeLa细胞所污染，致使许多实验宣告无效。非细胞培养物所造成的化学成分的污染也偶有发生，大多是由于细胞培养所需物品清洗消毒不彻底而带入一些有毒化学物质所致。 在上述的八种污染物中，黑胶虫是现代细胞培养中讨论比较多的，但大多数文献未对其进行描述或一带而过，就像上面关于描述黑胶虫的情况是不完整，还有很多不明的情况。对其身份有多种猜测，到现在都没有权威地对黑胶虫进行分类学上的归类。黑胶虫到底是不是一种生物，如果是那黑胶虫会是何种生物，如果不是，那黑胶虫会是什么？一系列的问题都悬在奋斗在细胞生物学领域的学者们的心中。上海劲马根据以上细胞污染都有解决办法，详情请来电咨询我司技术人员，我们配备有先进的实验设备，对这类实验有着丰富的经验，欢迎您的电联。我们将为广大客户提供更多更全面的售前售中，售后服务。
@中国安防展览网AFzhan
扫一扫，官方微博互动多
微信号：AFzhan
扫一扫，安防讯息尽收眼底
全年征稿 / 资讯合作
联系邮箱：
更多相关信息
版权与免责声明
①凡本网注明"来源：中国安防展览网"的所有作品，版权均属于中国安防展览网，转载请必须注明
中国安防展览网。违反者本网将追究相关法律责任。
②企业发布的公司新闻、技术文章、资料下载等内容，如涉及侵权、违规遭投诉的，一律由发布企业
自行承担责任，本网有权删除内容并追溯责任。
③本网转载并注明自其它来源的作品，目的在于传递更多信息，并不代表本网赞同其观点或证实其内
容的真实性，不承担此类作品侵权行为的直接责任及连带责任。其他媒体、网站或个人从本网转载时，
必须保留本网注明的作品来源，并自负版权等法律责任。
④如涉及作品内容、版权等问题，请在作品发表之日起一周内与本网联系，否则视为放弃相关权利。
免费注册后，你可以
了解安防行业更多资讯
查看安防行业供求信息
凸显安防行业自身价值
想快速被买家找到吗
只需要发布一条商机，
被买家找到的机会高达
90%！还等什么？
目前来说，如何推动企业发展，最重要的是要关注企业发展需求，创优企业发展
细数荣获多项认证的多款海曼智能探测器
送礼新时尚 云视通智能摄像机成春节送礼首选礼品
华本国际3D指纹门禁系统深度应用于校园宿舍
“云平台+智慧终端”模式破解基层社保卡应用难题
钱林景点自助售票机带来全新的旅游体验
丽珠集团利民制药厂购进钱林访客机
武汉市公安局出入境管理局到虹识考察
在北京安博会现场，中国安防展览网视频高端访谈栏目对深圳科地通信技术有限公司
超视科技：从“万物互联”到“万物有灵”
专访雄迈任旭升：专注技术 做好好产品和服务
巨峰科技：注重用户体验 做最好用的产品
华本国际：科技连接未来 未来始于创新
景阳科技：不断拓展细分 在行业中走出自己特色
为实战而生 科达猎鹰落实“机器识图”最后一公里
凯韵电子：提供给客户创造价值的服务
立林杨旭：开放心态面对市场 新“蛋糕”会更美味
　　探索行业发展趋势，记录企业点滴变化。由权威媒体中国安
　　10月25-28日在北京召开的2016年中国国际社会公共安全产
中国安防展览网主办、广州市思正电子科技有限公司独家冠名的
改革&创新&共赢，中国安防展览网主办，广州市思正
将安防&智慧理念&进行到底，&2016智慧安
2016广州国际智能家居&智能硬件展览会现已成为中国首屈
2017中国（广州）国际商业智能防盗系统及智能柜、存储柜展览会
2017第二届广州国际智能家居展览会
2017中国(武汉)公共安全产品暨警用装备展览会
2017中国（杭州）国际社会公共安全产品与技术博览会您所在位置： &
&nbsp&&nbsp&nbsp&&nbsp
细胞培养的一般过程.doc71页
本文档一共被下载：
次 ,您可免费全文在线阅读后下载本文档
文档加载中...广告还剩秒
需要金币：100 &&
你可能关注的文档：
··········
··········
细胞培养的一般过程
一、准备工作???? 准备工作对开展细胞培养异常重要，工作量也较大，应给予足够的重视，推备工作中某一环节的疏忽可导致实验失败或无法进行。准备工作的内容包括器皿的清洗、干燥与消毒，培养基与其他试剂的配制、分装及灭菌，无菌室或超净台的清洁与消毒，培养箱及其他仪器的检查与调试，具体内容可参阅有关文献。
在无菌环境下从机体取出某种组织细胞（视实验目的而定），经过一定的处理（如消化分散细胞、分离等）后接入培养器血中，这一过程称为取材。如是细胞株的扩大培养则无取材这一过程。机体取出的组织细胞的首次培养称为原代培养。
理论上讲各种动物和人体内的所有组织都可以用于培养，实际上幼体组织（尤其是胚胎组织）比成年个体的组织容易培养，分化程度低的组织比分化高的容易培养，肿瘤组织比正常组织容易培养。取材后应立即处理，尽快培养，因故不能马上培养时，可将组织块切成黄豆般大的小块，置4的培养液中保存。取组织时应严格保持无菌，同时也要避免接触其他的有害物质。取病理组织和皮肤及消化道上皮细胞时容易带菌，为减少污染可用抗菌素处理。? 由组织并分离分散细胞的方法可参阅有关文献。
将取得的组织细胞接入培养瓶或培养板中的过程称为培养。如系组织块培养，则直接将组织块接入培养器皿底部，几个小时后组织块可贴牢在底部，再加入培养基。如系细胞培养，一般应在接入培养器皿之前进行细胞计数，按要求以一定的量（以每毫升细胞数表示）接入培养器皿并直接加入培养基。细胞进入培养器皿后，立即放入培养箱中，使细胞尽早进入生长状态。
正在培养中的
正在加载中，请稍后...【图文】第二章
细胞培养及培养细胞的生物学特点_百度文库
两大类热门资源免费畅读
续费一年阅读会员，立省24元！
评价文档：
细胞培养及培养细胞的生物学特点
上传于||暂无简介
大小：2.78MB
登录百度文库，专享文档复制特权，财富值每天免费拿！
你可能喜欢细胞贴壁培养的时期跟特点是什么呀，求解答。_中科院吧_百度贴吧
&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&签到排名：今日本吧第个签到，本吧因你更精彩，明天继续来努力！
本吧签到人数：0成为超级会员，使用一键签到本月漏签0次！成为超级会员，赠送8张补签卡连续签到：天&&累计签到：天超级会员单次开通12个月以上，赠送连续签到卡3张
关注：58,271贴子：
细胞贴壁培养的时期跟特点是什么呀，求解答。收藏
创维55S9D全球首台AR电视 4色4K自发光 4色HDR JBL全音域音响
有木牛人呢
去年细胞考题
接触抑制，单层生长，必须贴附在支持物上。这个特点——来自 爱贴吧 Windows Phone 客户端
时期那个应该就是前，前中那几个吧，这个好像网上也没有，我也不确定——来自 爱贴吧 Windows Phone 客户端
分为5个时期：悬浮期，贴壁期，潜伏期，对数增长期和 停止期
登录百度帐号推荐应用
为兴趣而生，贴吧更懂你。或引用本文 0
申斓, 周爱东, 吴小芹. 植物细胞培养生物反应器的种类特点及展望[J]. 中国生物工程杂志, ): 109-115.
SHEN Lan, ZHOU Ai-dong, WU Xiao-qin . Characteristics and Prospects of Different Types of Bioreactors Used for Plant Cell Culture[J]. China Biotechnology, ): 109-115.
植物细胞培养生物反应器的种类特点及展望
吴小芹1 &&&&
1. 南方现代林业协同创新中心 南京林业大学林学院 南京 210037;2. 镇江市林业有害生物防控检疫站 镇江 212000
基金项目：江苏省科技支撑计划(BE2014405)、江苏省高校优势学科建设工程(PAPD)资助项目.
通讯作者, 电子信箱: xqwu@
摘要：生物反应器技术应用于植物细胞培养既可以打破环境条件的限制,又有助于生产过程的人为调控,为植物细胞大规模培养或工厂化直接生产植物细胞有用代谢产物创造了条件,是当前植物细胞培养工作的研究热点。在介绍植物细胞培养特点的基础上,对适用于植物细胞培养的各类生物反应器(搅拌式生物反应器、非搅拌式生物反应器、用于植物细胞固定化培养的生物反应器、光生物反应器以及一次性培养生物反应器)的原理、优缺点等进行比较分析,最后提出了植物细胞培养生物反应器研究的发展方向,以期为植物细胞培养生物反应器的选择及改良提供参考。
植物细胞&&&&
生物反应器&&&&
工厂化培养&&&&
Characteristics and Prospects of Different Types of Bioreactors Used for Plant Cell Culture
SHEN Lan1,
ZHOU Ai-dong2,
WU Xiao-qin1 &&&&
1. Co-Innovation Center for Sustainable Forestry in Southern China, College of Forestry, Nanjing Forestry University, Nanjing 210037, C2. Zhenjiang Forestry Pest Control and Quarantine Station, Zhenjiang 212000, China
Abstract:Bioreactor technology can not only break the limitation of environmental conditions, but also contribute to artificial control of the productive process when it is used for growing plant cells in vitro, which creates conditions for large-scale cultivation of plant cells or industrialized production of useful metabolites, and it has been considered as a hot topic in recent work on plant cell culture. Based on the characteristics of plant cell culture, the principles and the advantages and disadvantages of various kinds of bioreactors for plant cells including stirred tank reactor, non-stirred bioreactor, immobilized bioreactor, photo-bioreactor and single-use bioreactor, were compared and analysed. Finally, the future perspectives of bioreactors for plant cell culture were outlined.
Key words:
Plant cell&&&&
Bioreactor&&&&
Industrialized cultivation&&&&
加快优良植物材料的繁育和天然药物的开发以及保护利用珍稀植物资源一直是植物细胞培养工作的研究重点。为了大规模地生产天然植物源功能性成分或进行植物材料的规模化繁育，满足市场需求，能够打破地域气候等条件限制的植物细胞培养生物反应器技术就具有十分重要的作用。已有文献报道了许多与传统生物反应器不同的植物细胞培养生物反应器的原理及应用[]，它们大多通过调控生物反应器中的物化条件，以实现植物细胞最佳的生长、分化和代谢环境，缩短培养周期，为植物细胞的工业化培养或植株再生创造有利条件[]。本文针对植物细胞培养的基本特点，比较分析了应用于植物细胞培养的不同种类生物反应器的功能特点，并提出了植物细胞培养生物反应器研究的发展趋势。
1 植物细胞培养的特点及难点
植物细胞培养是在离体条件下，以单细胞或细胞团为单位进行的植物组织培养方式。该技术不受时空、外界自然环境和性状分离等的影响，可以短时间内大规模培养出比较均匀一致的细胞，便于后续的研究与利用。相对于动物细胞，植物细胞大部分能够悬浮生长，适于大规模培养。但植物细胞由于代谢活性较低，次生物质的合成和累积速度较慢，生长速率低，因而与微生物细胞培养相比，难度较大。植物细胞具有厚度不一的含纤维素的细胞壁，拉伸强度较高，因此对剪切力更为敏感，在培养时当转速超过一定数值，细胞生长会明显下降，并且会出现死亡和破碎现象[]。植物细胞需要较长的培养过程，而长时间保持无菌状态则给培养带来难度，培养过程中易造成污染且细胞常发生变异。植物细胞在悬浮培养时对氧的需求量较低，但由于植物细胞培养后期密度高、粘度大，氧的传输会受到阻碍，因此与微生物相比，在达到同样浓度时，氧传递速率要小得多[]。另外，植物细胞易于粘附成团使搅拌不匀而导致营养物质的传输受到限制[]，因而其二次代谢途径更加复杂。
2 植物细胞培养对生物反应器培养技术的要求
针对植物细胞培养的特点和难点，有研究表明，利用生物反应器技术培养植物细胞需注意以下几方面：(1)营养成分的有效供给。为加快植物细胞的生长速度，培养基中除添加碳源和氮源外，还可加入适当的植物生长调节剂[]；(2)保证长时间的无菌状态；(3)创造剪切力较低、足够的氧气和传质、混合性能良好的微环境[]；(4)严格控制植物细胞生长、分化和次生代谢物质合成与积累的关系，可利用动力学评估来确定最佳环境及操作模式[]；(5)探索物理、化学等因素对植物细胞代谢物的产量及质量的影响[]；(6)生物反应器需要较高的硬件配置[]等。
3 植物细胞培养生物反应器的种类与特点
从培养微生物细胞的生物反应器发展而来的用于植物细胞培养的生物反应器具有鲜明的特点。1959年Tulecke等[]第一次将微生物培养的发酵工艺应用到高等植物细胞的悬浮培养。植物细胞培养生物反应器技术为植物有用代谢产物的合成提供了有效途径。目前用于植物细胞培养的生物反应器种类较多，主要有搅拌式、气升式、鼓泡式及转鼓式生物反应器，此外还有植物细胞固定化培养生物反应器、光生物反应器及一次性培养生物反应器等。
3.1 搅拌式生物反应器
机械搅拌式生物反应器是借搅拌涡轮加以混合以及相际传质。其操作范围较大，混合程度高，传质环境均匀，适应性广，因此在植物细胞培养[]、植物组织培养[, , ]以及利用转基因技术生产重组蛋白等生产实践中得到广泛应用[]。搅拌式生物反应器应用于植物细胞培养时存在的主要问题是植物细胞壁对剪切的耐受力差，搅拌过程中较大的剪切力容易损坏细胞，影响其生长及代谢产物的生产[]。搅拌器的形式对搅拌式生物反应器的应用影响很大，因为搅拌器搅拌的速度越高，顶部气泡破裂越快，产生的剪切力就越大，对植物细胞的伤害也越大。因此对剪切力敏感的细胞不适用于传统的搅拌式生物反应器[]，但是经过对搅拌形式、叶轮结构、曝气系统以及保护剂等方面的改进，可以大大降低其对细胞的剪切作用。有研究对不同类型搅拌器进行了比较，发现桨形板搅拌器适合植物细胞生长[]。也有学者采用带有1个双螺旋带叶轮和3个表面挡板的搅拌罐，证明其适用于剪切力敏感的高密度植物细胞培养[]。而程龙等[](2008)将两个相同的通气搅拌式生物反应器通过0.22 mm微孔膜进行分隔、耦合，组合成一个能使全部物质发生通透而不同细胞间不能互相接触的耦合式生物反应系统，并利用美丽镰刀菌(Fusarium mairei)与东北红豆杉(Taxus cuspidate)悬浮细胞的耦合培养使紫杉醇大量分泌到胞外。由此可见，对搅拌式生物反应器内部结构的改进可以降低剪切力对植物细胞的伤害，提高代谢物质产量，并且可以拓宽搅拌式生物反应器的应用范围。
3.2 非搅拌式生物反应器
与传统的搅拌式生物反应器比较，非搅拌式生物反应器结构简单，产生的剪切力更小，适合进行植物细胞培养。非搅拌式生物反应器的主要类型有气升式生物反应器、鼓泡式生物反应器和转鼓式生物反应器等。
气升式生物反应器是通过在罐外装设上升管，使其两端分别连接罐底及罐上部，由此构成一个循环系统。其运行成本和造价低，通过上升液体和下降液体的静压差实现气流循环，以保证良好的传质效果，同时使剪切力的分布更均匀，并且可以促进培养基和细胞在较短混合时间内的周期运动。另外，由于其没有搅拌装置，更容易长期保持无菌状态[, ]。但气升式生物反应器也有一定的缺点，即操作弹性小，当低气速在高密度培养时混合效果较差，导致植物细胞生长缓慢。为弥补这一缺点，可以将气升式发酵罐与慢速搅拌相结合，这样也有利于氧的传递[]，目前已有搅拌气升式生物反应器应用于西洋参(Panax quinquefolius)、紫草(Lithospermum erythrorhizon)、檀香木(Santalum album)[]以及唐松草(Thalictrum rugosum)[]等植物细胞的培养。将气升式生物反应器应用于植物细胞培养时，还必须结合细胞的生理特性对其加以改进，这样才能更好地适应植物细胞培养的要求[]。如Thanh等[](2014)针对人参(Panax ginseng)细胞悬浮培养的特点，对5 L气球型气升式生物反应器的参数、通气量、接种密度等进行了优化，建立了生产人参皂苷的500 L容量的大型滚筒式和气球式生物反应器，它们分别可生产187 kg及400 kg的鲜物质量、6.2 kg及13.3 kg的干物质量以及7.86 mg/g DW及7.75 mg/g DW的总皂苷，适当通风尤其是高氧气传递系数可能是气球型生物反应器在生物量的积累上更优越的原因，这些结果对商业化生产植物细胞有用代谢产物有很大的帮助。
鼓泡式生物反应器结构简单，整个系统密闭，气体从底部通过孔盘或喷嘴穿过液池来实现气体交换和物质传递，易于长时间无菌操作。该生物反应器在植物组织培养中应用较为普遍，其内部不含转动部分，培养过程中无需机械能损耗，因此也适合培养对剪切力敏感的植物细胞如人参细胞等[]。陈书安等[](2011)通过比较藏红花(Crocus sativus)细胞在3种生物反应器中的培养结果，发现鼓泡式生物反应器更适于藏红花素的生产。但鼓泡式生物反应器的缺点是氧气传输能力差，而在高通气量条件下又会产生大量泡沫，另外对于高密度及高粘度的培养体系，流体混合性也较差[]。因此，可以通过在鼓泡塔内不同区段安装多个排气管将氧气输送到塔中高细胞密度区域以提高鼓泡式生物反应器的性能[]。
转鼓式生物反应器与其它类型的生物反应器相比具有适中的表面积-体积比，可以在更低的能耗与剪切力环境下提供足够的氧气，同时其悬浮系统均一，可避免细胞粘壁，因此适于高密度植物悬浮细胞的培养，且已用于蔓长春花(Vinca rosea)[]、紫草(L. erythrorhizon)[]、烟草(Nicotiana tabacum)等的培养。Shibasaki等[](1992)利用转鼓式生物反应器对烟草细胞进行悬浮培养，发现相同曝气条件下与仅有一个导流管的气升式生物反应器相比，转鼓式生物反应器中烟草细胞的生长率更高，并且其氧气的传递效率及剪切力对细胞的伤害水平均优于气升式生物反应器。但这种生物反应器的不足是在大规模操作中会消耗相对较高的能量，并且难以按比例扩大培养。
3.3 植物细胞固定化培养生物反应器
植物细胞的固定化是将细胞固定在多糖或多聚化合物等载体上，以便在不同类型的反应器中进行培养。一般脆弱细胞采用这种方式，因为固定化培养可以降低剪切力对细胞的损伤，产生较多固液特定界面的接触，并且有利于次级代谢产物的积累，适合进行连续培养或生物转化等。尽管包裹在载体基质内的固定化细胞的微环境与在流体中不同，但是通过选择适当的细胞固定化载体，仍可以达到高细胞密度，实现高产量[]。目前已有应用于辣椒(Capsicum annuum)[]、毛地黄(Digitalis lanata)[]、雷公藤(Tripterygium wilfordii)[]、咖啡(Coffea arabica)[]以及胡萝卜(Daucus carota)[]等植物细胞固定化培养的报道。植物细胞的固定化培养生物反应器主要有流化床生物反应器及填充床生物反应器等。
流化床生物反应器是一种循环式反应器，流体可在高速下运转，停留时间较长，使反应混合均匀，但包裹于胶粒、金属或泡沫中的细胞颗粒之间的碰撞容易造成细胞的损伤。有学者将长春花(Catharanthus roseus)细胞包裹在海藻酸钙凝胶球中，并利用流化床生物反应器对其进行培养以连续生产植物细胞悬浮液[]。Bramble等[](1990)研制了一种磁稳定型流化床生物反应器，传质良好，能减少颗粒碰撞，在批处理模式下培养固定于海藻酸钙内的植物细胞结果表明，细胞的生长状况与在摇瓶培养中相当。而填充床生物反应器比流化床生物反应器或者气升式生物反应器更容易实现高密度培养，这种反应器是将细胞固定于支持物表面或者内部，支持物颗粒堆叠成床，培养基则在床间流动。但其混合效果不好，传质传热较差，并且受压时容易导致颗粒脆裂，产生缝隙[, ]。
3.4 光生物反应器
光生物反应器是培养植物细胞、光合细菌等特有的反应器。在普通反应器的基础上增加光照系统，可以满足植物的光合作用，使植物细胞内的多种酶类产物在光照的诱导下表现出较高的生理活性。但实际上要考虑的问题还包括光的传递，光源的安装、保护，光照系统对反应器供气、混合的影响等。Fischer等[](1995)利用气升式生物反应器研究了光照条件对红叶藜(Chenopodium rubrum) 生物量积累的影响，为光生物反应器的研究提供了一定的参考。Ogbonna等[](1995)提出容积光分布系数(Kiv)的概念，可用于定量评价光生物反应器内部光的条件。目前人们研究出的光生物反应器有多种形式，其中以用于大规模培养植物光合细胞的内部光照式生物反应器最具代表性[, ]。张俊杰等[](2012)使用自制的大规模封闭式管道光生物反应器，探讨适宜于小球藻(Chlorella)高产的工厂化培养方式。这些学者对采用内部光源的生物反应器的研究解决了内部培养物对光的均匀接受等问题，适应了特定植物细胞的生长。
3.5 一次性生物反应器
在过去十年中，一次性使用的生物反应器被越来越多的中小规模生物技术工艺所接受。与传统的具有由玻璃或不锈钢制成的培养容器的生物反应器相比，一次性生物反应器的培养容器通常是由美国食品药品监督管理局(FDA)批准的生物相容性塑料(例如聚乙烯，聚苯乙烯，聚四氟乙烯，聚丙烯)制成，一般是一个硬质容器或者是由一个支撑容器固定、塑形的柔性多层袋。其设施及配置简单，且容器经过预无菌处理，省去了清洗和消毒环节，并可在收集产品后丢弃，减少了交叉污染，灵活性高的同时还可以节省时间和成本[, ]。但是当前使用一次性生物反应器还存在一定的限制条件，包括塑料材料在扩展性方面强度不足以及一次性传感器和外围元件(如阀门和采样系统等)的可用性等[]。
现在已有许多不同类型的一次性生物反应器应用于植物细胞培养，包括机械驱动式一次性生物反应器，液压驱动式一次性生物反应器及气压驱动式一次性生物反应器等[]。Werner等[](2013)通过比较烟草(N. tabacum)BY-2细胞及葡萄(Vitis vinifera)悬浮细胞在500 ml摇瓶、波动混合式一次性袋及轨道摇动式一次性袋中的培养情况(包括细胞体积、鲜重、代谢物浓度等)，发现轨道摇动式一次性袋非常适合台式规模的植物细胞悬浮培养。一些研究也表明一次性生物反应器适合培养转基因植物细胞以生产治疗性外源蛋白及化妆品业的原材料[]。Kwon等[](2013)就利用两种一次性生物反应器进行转基因水稻细胞培养生产重组人细胞毒T细胞抗原4免疫球蛋白(hCTLA4Ig)，与搅拌式生物反应器比较，利用两种一次性生物反应器均可达到相似的最大细胞密度(11.9和12.6μgDCW/L)、倍增时间(4.8和5.0 d)及最大hCTLA4Ig浓度(43.7和43.3mg/L)。但是由于一次性生物反应器现存的不足，利用这种培养系统进行按比例放大培养仍有一定困难。
目前，使用一次性生物反应器进行植物细胞培养还远未达到进行哺乳动物细胞培养的重要性水平，这是因为利用植物细胞制造高价值产品仍相对少见。但这却是植物细胞生物反应器的发展趋势，也许未来基于植物体外细胞培养特点的适用于传统生物反应器的方法也会重新设计为适用于一次性生物反应器。
植物细胞培养生物反应器技术在过去的几十年中发展迅速，但用于工业化和商业化生产，以下几方面尚待进一步研究：(1)加强对培养过程中植物细胞生理特性的研究，在实用性的基础上进行生物反应器的研制，这将有可能在植物细胞培养工作中取得根本性的突破。如在优化培养基成分的基础上，优化生物反应器的结构，综合考虑供氧条件和剪切条件以及光照、温度、pH的影响[, ]，建立完整的在线检测系统，将生物学和工程技术相结合，使植物细胞培养朝着有利的方向发展。(2)对植物细胞培养生物反应器连续培养方式高效的过程控制，使人为调控大规模培养过程中细胞的生长速率及次级代谢产物的产生速率成为可能。因此，需要及时进行放大实验，确定所用植物细胞的最佳培养方式，为大规模商业化生产提供更坚实的基础。(3)植物细胞培养是植物细胞工程研究的重要领域。如高等植物的遗传工程就需要利用植物细胞体外培养技术，使遗传转化的细胞再分化成有利用价值的再生植株。因此植物细胞培养需结合现代分子生物学技术，从基因水平和代谢水平深入探索生物反应器对植物细胞培养的作用机理。(4)随着对植物细胞培养技术的深入探索，生物反应器技术将成为未来研究药用植物的重要课题之一[]，也是探索天然药物工业化生产的重要途径。其中，选育药用植物稳定高产的优良细胞系是提高药用植物细胞生物反应器技术可行性的前提。在重视药用植物资源保护及有效利用的今天，利用植物细胞生物反应器培养技术来大规模地直接生产药用有效成分具有重要的现实意义。
黄艳, 赵德修, 李佐虎. 植物细胞生物反应器培养的研究进展(I). 植物学通报, ): 567-570.Hung Y, Zhao D X, Li Z H. Advances in the study on plant cell culture by bioreactor (I)..
王志江, 郑裕国. 动植物细胞培养生物反应器的研究进展. 药物生物技术, ): 117-120.Wang Z J, Zheng Y G. Technical research on the bioreactors for zooblast and plant cell cultivation..
Smart N J, Fowler M W. Effect of aeration on large-scale cultures of plant cells..
Taticek R A, Moo-Young M, Legge R L. Effect of bioreactor configuration on substrate uptake by cell suspension cultures of the plant Eschscholtzia californica..
边黎明, 施季森. 植物生物反应器细胞悬浮培养研究进展. 南京林业大学学报: 自然科学版, ): 101-104.Bian L M, Shi J S. Review on plant bioreactor for plant cell suspension culture..
余响华, 邵金华, 袁志辉, 等. 植物细胞工程技术生产紫杉醇研究进展. 西北植物学报, ): .Yu X H, Shao J H, Yuan Z H, et al. Research progress on production of taxol by plant cell engineering..
董燕, 刁玲武, 周联. 药用植物细胞悬浮培养的影响因素. 中医药信息, ): 36-40.Dong Y, Diao L W, Zhou L. Influencing factors on the culturing of medicinal plants suspension cell..
Georgiev M I, Eibl R, Zhong J J. Hosting the plant cells in vitro: recent trends in bioreactors..
杨小兵, 王增利, 史昊, 等. 光强对悬浮培养下铁皮石斛原球茎生长的影响. 河南农业科学, ): 116-119.Yang X B, Wang Z L, Shi H, et al. Effect of light intensity on protocorm-like bodies growth of Dendrobium candidum under condition of suspension culture..
Georgiev M I, Weber J. Bioreactors for plant cells: hardware configuration and internal environment optimization as tools for wider commercialization..
Tulecke W, Nickell L G. Production of large amounts of plant tissue by submerged culture..
Verma P, Mathur A K, Masood N, et al. Tryptophan over-producing cell suspensions of Catharanthus roseus (L) G. Don and their up-scaling in stirred tank bioreactor: detection of a phenolic compound with antioxidant potential..
Homova V, Weber J, Schulze J, et al. Devil’s claw hairy root culture in flasks and in a 3-L bioreactor: bioactive metabolite accumulation and flow cytometry..
Donnez D, Kim K H, Antoine S, et al. Bioproduction of resveratrol and viniferins by an elicited grapevine cell culture in a 2L stirred bioreactor..
Hilton M G, Rhodes M J C. Growth and hyoscyamine production of ‘hairy root’ cultures of Datura stramonium in a modified stirred tank reactor..
Liu Y K, Li Y T, Lu C F, et al. Enhancement of recombinant human serum albumin in transgenic rice cell culture system by cultivation strategy..
刘春朝, 王玉春. 剪切力对植物细胞悬浮培养的影响. 化工冶金, ): 379-384.Liu C Z, Wang Y C. Effects of shear stress on suspension cultivation of plant cells..
刘春朝, 叶和春. 利用气升式内环流生物反应器培养青蒿毛状根生产青蒿素. 植物学报, ): 181-183.Liu C Z, Ye H C. Production of artemisinin by Artemisia annua hairy root culture in a internal loop airlift bioreactor..
Tanaka H. Oxygen transfer in broths of plant cells at high density..
Kamen A A, Chavarie C, Andre G, et al. Design parameters and performance of a surface baffled helical ribbon impeller bioreactor for the culture of shear sensitive cells..
程龙, 张梁, 陶文沂, 等. 耦合培养对紫杉醇产量的影响. 生物加工过程, ): 51-55.Cheng L, Zhang L, Tao W Y, et al. The effects of coupling cultivation on the paclitaxel yield..
Jin M Y, Piao X C, Xiu J R, et al. Micropropagation using a bioreactor system and subsequent acclimatization of grape rootstock ‘5BB’..
Cui H Y, Baque M A, Lee E J, et al. Scale-up of adventitious root cultures of Echinacea angustifolia in a pilot-scale bioreactor for the production of biomass and caffeic acid derivatives..
欧阳平凯, 陆永明, 肖民耕, 等. 大规模植物细胞培养生物反应器. 生物工程进展, ): 9-13.Ouyang
P K, Lu Y M, Xiao M G, et al. Bioreactors for large-scale plant cell culture..
Valluri J V, Treat W J, Soltes E J. Bioreactor culture of heterotrophic sandalwood (Santalum album L.) cell suspensions utilizing a cell-lift impeller..
Kim D I I, Pedersen H, Chin C K. Cultivation of Thalictrum rugosum cell suspension in an improved airlift bioreactor: stimulatory effect of carbon dioxide and ethylene on alkaloid production..
Kaewpintong K, Shotipruk A, Powtongsook S, et al. Photoautotrophic high-density cultivation of vegetative cells of Haematococcus pluvialis in airlift bioreactor..
Thanh N T, Murthy H N, Paek K Y. Optimization of ginseng cell culture in airlift bioreactors and developing the large-scale production system..
Thanh N T, Murthy H N, Yu K W, et al. Methyl jasmonate elicitation enhanced synthesis of ginsenoside by cell suspension cultures of Panax ginseng in 5-l balloon type bubble bioreactors..
陈书安, 王晓东, 袁晓凡, 等. 应用鼓泡塔式反应器生产藏红花素的研究. 中国医药生物技术, ): 141-144.Chen S A, Wang X D, Yuan X F, et al. Production of crocin by bubble column reactor..
Wilson S A, Roberts S C. Recent advances towards development and commercialization of plant cell culture processes for the synthesis of biomolecules..
Mishra B N, Ranjan R. Growth of hairy-root cultures in various bioreactors for the production of secondary metabolites..
Tanaka H, Nishijima F, Suwa M, et al. Rotating drum fermentor for plant cell suspension cultures..
Shimomura K, Sudo H, Saga H, et al. Shikonin production and secretion by hairy root cultures of Lithospermum erythrorhizon..
Shibasaki N, Hirose K, Yonemoto T, et al. Suspension culture of Nicotiana tabacum cells in a rotary-drum bioreactor..
Huang T K, McDonald K A. Bioreactor systems for in vitro production of foreign proteins using plant cell cultures..
Williams P D. Capsicum spp.(Peppers):In vitro production of capsaicin. Biotechnology in Agriculture and Forestry, ):51-63.
Alfermann A W, Bergmann W, Figur C, et al. Biotransformation of beta-methyldigitoxin to beta-methyldigoxin by cell cultures of Digitalis lanata..
Pépin M F, Chavarie C, Archambault J. Growth and immobilization of Tripterygium wilfordii cultured cells..
Furuya T, Koge K, Orihara Y. Long term culture and caffeine production of immobilized coffee (Coffea arabica L). cells in polyurethane foam..
Veliky I A, Jones A. Bioconversion of gitoxigenin by immobilized plant cells in a column bioreactor..
Morris P, Smart N J, Fowler M W. A fluidised bed vessel for the culture of immobilised plant cells and its application for the continuous production of fine cell suspensions..
Bramble J L, Graves D J, Brodeliust P. Plant cell culture using a novel bioreactor: the magnetically stabilized fluidized bed..
Prenosil J E, Pedersen H. Immobilized plant cell reactors..
G?ksungur Y, Zorlu N. Production of ethanol from beet molasses by Ca-alginate immobilized yeast cells in a packed-bed bioreactor.
Fischer A U, Alfermann W. Cultivation of photoautotrophic plant cell suspensions in the bioreactor: influence of culture conditions..
Ogbonna J C, Yada H, Tanaka H. Light supply coefficient: a new engineering parameter for photobioreactor design..
Xue S, Zhang Q, Wu X, et al. A novel photobioreactor structure using optical fibers as inner light source to fulfill flashing light effects of microalgae..
董汝晶, 谯顺彬, 田辉, 等. 藻类光生物反应器的设计及应用研究. 食品工业科技, ): 306-309.Dong R J, Qiao S B, Tian H, et al. Design of photo-bioreactor and the application for cultivating algae..
张俊杰, 袁晓雄, 林建, 等. 大规模封闭式光生物反应器培养小球藻效果试验. 盐业与化工, ): 28-32.Zhang J J, Yuan X X, Lin J, et al. Experiment on culturing Chlorella in closed photobioreactor with large-scale..
Lim J A, Sinclair A. Process economy of disposable manufacturing-process models to minimize upfront investment..
Mauter M. Environmental life-cycle assessment of disposable bioreactors..
Eibl R, Eibl D. Single-use Technology in Biopharmaceutical Manufacture..
Paek K Y, Murthy H N, Zhong J J. Production of biomass and bioactive compounds using bioreactor technology..
Werner S, Olownia J, Egger D, et al. An approach for scale-up of geometrically dissimilar orbitally shaken single-use bioreactors..
Kwon J Y, Yang Y S, Cheon S H, et al. Bioreactor engineering using disposable technology for enhanced production of hCTLA4Ig in transgenic rice cell cultures..
成喜雨, 何姗姗, 倪文, 等. 植物组织培养生物反应器技术研究进展. 生物加工过程, ): 18-22.Cheng X Y, He S S, Ni W, et al. Advances in bioreactor technology for plant tissue culture..
王士杰, 许永华, 郜玉铜, 等. 发酵技术在植物细胞生产中的应用现状. 安徽农业科学, ): 8-10.Wang S J, Xu Y H, Gao Y T, et al. The application of fermentation technology in plant cell culture..
刘颖, 李冬杰, 魏景芳. 药用植物细胞生物反应器技术的研究进展..}