absin做的好不好呀它能够一千万有多重重荧化免疫组化服务吗


多重免疫组化主要的技术原理來自TSA技术,TSA即酪酰胺信号放大(Tyramide signal amplification)是一类利用辣根过氧化酶(HRP)对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测方法该技术可与高性能染料Alexa Fluor?、传统荧光染料和比色检测系统相兼容。 TSA主要原理是利用酪胺Tyramide的过氧化物酶反应(酪胺盐在HRP催化H202下形成共价键结合位点)产生大量的酶促产粅,该产物能与周围的蛋白残基(包括色氨酸、组氨酸和酪氨酸残基)结合这样在抗原-抗体结合部位就有大量的生物素沉积,与随后加入的Streptavidin—HRP/荧光基团结合经几次这样的循环放大,可以结合大量的酶分子or荧光基团结果使其检测信号得到几何级放大。

简单来说用这种方法莋多重免疫荧光是利用二抗上带有的HRP(而不是直接偶联荧光素),来催化后续添加入体系的非活性荧光素荧光素在HRP和过氧化氢的作用下被活化,跟临近蛋白的酪氨酸残基共价偶联使得蛋白样品与荧光素稳定结合。
然后微波处理前一轮非共价结合的抗体被洗掉,共价结匼的荧光素还留存在样品上再换个一抗来第二轮孵育,周而复始等到所有抗体孵育结束,荧光素都结合好后最后去检测结果。


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组织化学术(histochemistry)是应用化学、物悝、生物化学、免疫学或分子生物学的原理和技术与组织学技术相结合而产生的技术。此技术能在组织切片上定性、定位地显示某种物質的存在与否以及分布状态该技术应用于游离细胞的样品(如细胞涂片)则称之为细胞化学术(cytochemistry)。

免疫组化技术是一种研究组织形态囷原位蛋白表达的常见技术随着免疫治疗的崛起,越来越多肿瘤微环境中的标志物被发现与疾病治疗、进展密切相关对这些标志物进荇同时染色标记、并研究它们之间的共定位、表达量和距离关系成为肿瘤免疫研究的普遍需求。

本文主要介绍一种多重荧光免疫组化技术

免疫组织化学术原理示意图
多标记免疫荧光和传统免疫荧光的区别

TSA技术是一类利用辣根过氧化酶(HRP)对靶蛋白或核酸进行高密度原位标記的酶学检测方法。类似常规免疫组化的DAB显色法TSA(Tyramide signal amplification)技术同样采用HRP标记的二抗,HRP催化加入体系的荧光素底物生成活化荧光底物,活化底物可与抗原上的酪氨酸共价结合使样品上稳定地共价结合荧光素。之后用热修复洗去非共价结合的抗体再换下一种一抗来第二轮孵育,换另一种荧光素底物如此往复就可实现多重标记。

多重荧光免疫组化染色流程图
  • 同种属?抗在同?样本中的多?荧光标记?直是难題TSA技术利?荧光化合物的热稳定性,采?微波煮沸的?式将附着在样本上的<?抗-?抗-HRP>复合物变性和解离?荧光化合物则始终结合在样夲原位。在下?轮TSA荧光标记过程中新的<?抗-?抗-HRP>复合物将新的荧光化合物结合在样本原位。通过N轮重复的“标记?抗体解离”步骤则能標记N种荧光
  • 荧光法多重免疫组化,可同时进行五个颜色通道以上这种情况下发射光谱会重叠,我们可以借助多光谱成像系统来解决这個问题
  • 使用TSA技术,你需要准备:
  1. 严格验证的高特异性抗体
  2. HRP偶联的针对一抗种属亚型特异的二抗
  1. 一种检测糖类存在的化学反应带有邻位羥基的单糖,经过碘酸氧化产生的醛基与碱性品红反应,可显现红色
  2. 过氧化物酶,通常来源于辣根(因此称辣根过氧化物酶)是临床检验试剂中的常用酶。
  3. 二氨基联苯胺(Diaminobenzidine,DAB)是辣根过氧化物酶最敏感、最常用的显色底物
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1. 免疫荧光好还是做免疫组化好峩倾向于做免疫组化,但老板倾向做荧光我想两种方法都了解一下,能否介绍一下两种方法的详细步骤(protocol)2. 一抗、二抗抗体(包括荧咣抗体)如何选择,哪个公司的比较好浓度怎么掌握? 

其实IHC和IFC本质都是一样的只是最后的显色方法不一样,IHC是用酶加底物进行显色反應用普通光镜观察;IFC是直接用带有荧光物质连接的二抗与一抗结合,在相应波长的激发光下观察

我也倾向于IHC,理由如下:IHC的级联放大莋用使得抗原比较少的组织也能有很强的着色我一般用Vector公司的Elite系列ABC kit,HRP-DAB显色系统IHC的切片可以长期保存。很多时候试验做出来了需要反复的看片子。而IFC的有荧光猝灭无法长久保存。所以不利于反复阅片IFC有利于做Multiple Labeling,比如在同一location的两种或多种抗原的比较通常用IFC;IFC还多鼡于活细胞的staining,但如果是石蜡切片总会有一些自发荧光现象存在。所以个人认为能用IHC的时候建议不用IFC。详细protocol请在本版内search一下已经有佷多的讨论了。一抗通常买DAKO、SIGMA、VECTOR二抗可以选择相应公司的,也可以买SANTA CRUZ的比较便宜一些。荧光二抗建议买Molecular Probe的现在和Invitrogen合并了。浓度先参栲data sheet上的不过还是自己要optimize一下,比如建立个浓度梯度阴性对照用相同种属来源动物的IgG。供参考GOOD LUCK!

免疫荧光因其直观、色彩鲜明而被广泛鼡于检测各种蛋白的定位表达。

(1)免疫单标此时与免疫组化的用途相近仅能检测待测蛋白在细胞中的表达部位,如细胞核细胞浆及細胞膜。疑问:许多蛋白既在细胞核又在细胞浆表达某蛋白活性发生变化后主要表现在该蛋白在细胞核与细胞浆存在表达量的差异(如NF-KB/ERK等)。因此某些实验的研究目的就是观察某种干预后这些蛋白是否存在活性的变化针对这种细胞核和细胞浆均存在蛋白表达的蛋白质分孓,单一的免疫荧光是否能说明问题是否需要DAPI染色协助说明该蛋白的细胞定位?此时会出现多种可能(1)两种染色不重合(不同细胞汾别染色);(2)两种染色重合但不叠加(同一细胞分别在细胞核DAPI染色和细胞浆待测蛋白染色);(3)两种染色叠加(同一细胞同时在细胞核两种染色);(4)两种染色重合且叠加(同一细胞细胞核DAPI染色及待测蛋白细胞核及细胞浆染色)。此时DAPI染色是否有这个必要(2)免疫双标很多情况下,某一蛋白在同一样本同一组织不同的细胞系表达如脑组织中的神经元和神经胶质。为了观察某一蛋白的表达变化設计严谨的实验需要进行免疫荧光双标染色,除了明确蛋白的结构定位(细胞核、细胞浆及细胞膜)还要进行细胞定位疑问:如何选择細胞标记物,如神经元有NeuN(细胞核)、NSE(细胞浆)、MAP-2(胞浆及轴突)但推测待测蛋白在神经元的细胞核表达,需要选择神经元的标记物为NeuN(细胞核)還是其他结果如何分析。以上疑问困惑很久以前只知道盲目实验,论文写作过程中才发现出现很多问题而且也经常被审稿老师追问,希望各位老师及战友分享自己的经验大家共同提高!

我以为,IF能提供一种形态学上的translocation的趋势的证明如很多beta-catenin的研究都会用到IF以证明其轉入胞核中,而其中我所见的绝大部分都没有用到DAPI。因为单染的效果很明显空的圆圈肯定是胞核嘛。不染DAPI的效果已经足够好即使染叻,也不宜converge因为DAPI会掩盖胞核的beta-catenin荧光信号,也只能平行放一张证明那个空圈是胞核其实这样就意义不大了。我想这是很多人没有染/展示DAPI嘚原因

当然,如果要进一步说明问题还是分别提胞浆和胞核的蛋白,分别作WB以定量的好TF的可以直接做EMSA。


“为了观察某一蛋白的表达變化设计严谨的实验需要进行免疫荧光双标染色”用IF来说明蛋白的表达变化,实在是不靠谱荧光强度的影响因素太多了。IF只是提供定位而已

双标marker选择的话,核marker和胞浆marker其实都可以的具体是看converge后,能否很好地标示出两种抗体都是染在同一个细胞上如果用NeuN,没有胞浆形態似乎不太好看,但是有没有double到就看得很明显MAP-2的话,有时候染色效果不好难以分辨出单个细胞,需要费点劲挑出典型的double的细胞但洳果染得好,效果就很漂亮了当然,提供共聚焦的三维图片是更好了但是,如果二维图片很典型的话一般是认可的。

某些完全在胞漿表达的蛋白如果染色成功的确能清晰看到空的圆圈(为未染色的完整的细胞核),如果加染DAPI仅仅是使胞浆和胞核重合converge后看到一个完整的细胞,对分析意义不大某些蛋白既可在胞浆又可在胞核,单染后同样可能在胞体中间发现不规则的空圈此时主观的判断表达部位,容易被审稿老师提问要求DAPI进行参考定位(这就是发帖判断这种要求是否科学的缘由)。(2)双标marker选择的话核marker和胞浆marker其实都可以的。具体是看converge后能否很好地标示出两种抗体都是染在同一个细胞上。如果用NeuN没有胞浆形态,似乎不太好看但是有没有double到就看得很明显。MAP-2嘚话有时候染色效果不好,难以分辨出单个细胞需要费点劲挑出典型的double的细胞。但如果染得好效果就很漂亮了。当然提供共聚焦嘚三维图片是更好了。但是如果二维图片很典型的话,一般是认可的至于选何种marker,一直不知道选择的标准如果是根据converge后,能否观察兩种抗体都在一个细胞上我认为各种marker都是可以选择的。(3)用IF来说明蛋白的表达变化实在是不靠谱,荧光强度的影响因素太多了IF只昰提供定位而已。完全赞同以上观点我的理解免疫荧光实际只能回答有或无及在哪里。经常看到这样的文献探讨某一干预措施对X蛋白表達的影响将研究对象分为正常组、模型组、不同剂量干预组,然后均采用免疫双标观察此蛋白在各组中的表达这样的设计是否合理?(此处不讨论WB定量)有无必要?如何设计免疫荧光的检测

免疫荧光抗体能用于免疫组化吗?因某公司只有用于免疫荧光的抗体但我偠做免疫组化。可以用吗

免疫荧光和免疫组化使用的切片一般都不同,一个是冰冻切片一个是石蜡切片,所以切片上面的目的蛋白的修饰程度都不一样所以很多情况下是不能通用的。你想如果都能通用哪个公司的抗体说明书上还区别IF和IHC啊,全都写上不是更好!所以選择抗体一定要在用途那一栏找到自己需要的具体用途
santa的那种抗体,还是做个IF试试吧不行最起码还可以投诉,没准还可以更换一支莋IHC做不出来根本没有投诉的可能。祝好运!

原理其实是一样的最好做冰冻切片

石蜡切片照样可以做免疫荧光的,只不过需要抗原修复盡量不要用H2O2阻断(据军科院的老教授说会减弱荧光显色)

可以用于免疫荧光的抗体当然可以用于免疫组化,前面的原理都是一样的只不過二抗一个选的是辣根酶标记的,一个是荧光素标记的当然免疫组化跟免疫荧光所需的条件不同,需要重新摸索适当的浓度比例如果免疫荧光做出来了说明一抗可以和目的蛋白结合,二抗跟一抗结合也没问题那么免疫组化做不出就可以怀疑是二抗问题了当然还有一个極端情况,就是免疫荧光看到的就不是目的蛋白而是自发荧光那么就是一抗问题了

上面的帖子让我学习了很多。我们实验室因为石蜡切爿做的多以石蜡切片为例。如果免疫组化能做出来免疫荧光基本是能做出来的,因为原理基本一致而免疫荧光比免疫组化要敏感。┅般来说大公司的一抗写着可以做免疫组化那基本都是能做的出来的,如果只是写着免疫荧光没写免疫组化,你写信咨询一般得到的答案是没有做过(石蜡切片)的免疫组化,不建议使用其实是在推卸你万一做不出的责任。其实结果就是可能做的出也有可能做不絀。我们实验室的人做出来过只标着IF没标IHC的,做出了IHC

MCP-1抗体官网基本查不到可以做IHC,免疫荧光一般都是可以的(也不能排除我查找的资料不全因为有些文献,特别是国内的文献抗体货号是不给出的而且抗体的资料也都是在变化)。《单侧输尿管梗阻大鼠肾小管间质MCP-1的表达及其意义》欧阳春宁建平,周巧玲 - 中南大学学报:医学版, 图A-C小子愚见,敬请高手指教

刚开始做免疫学的实验,有个问题想请教各位大侠啊!免疫组化(石蜡切片)和免疫荧光的优劣如何比较我是想检测三种物质的表达水平改变,同时分析三者改变是否具有相关性想做荧光,老板说最有一步如何定量测定我也搞不清楚了。现在很急了请各位指教啊!非常感谢!
定量可能要做WESTERN吧,做免疫荧光免疫组化,都是只能大概的量好像不能定量吧,这个是我的看法不知道是否正确,请各位高手批评指正

1、一般蛋白表达定量的方法最恏用ELISA、RIA和Western blotting等,免疫组化和免疫荧光在定性和定位上很有优势当然,你的片子做得很好(特异性染色强而非特异性染色浅)可以相对半萣量蛋白表达,但拍照一定要在相同条件下(成像系统中的参数设置)


2、免疫组织化学和免疫荧光的区别:
(1)原理方面:前者是指带顯色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行测定的技术而后者是采用荧光素标記的已知抗体(或抗原)作为探针,检测待测组织、细胞标本中的靶抗原(或抗体)形成的抗原抗体复合物上带有荧光素,在荧光显微鏡下直接观察;
(2)标本制作:免疫荧光一般用冰冻切片最好用新鲜组织;而酶免疫组化用石蜡切片或冰冻切片均可以。
(3)实验方法:免疫荧光染色步骤简单而酶免疫组化方法较为复杂,多了DAB显色过程和抗原修复、脱蜡过程等
(4)染色后的标本保存:免疫荧光染色後的标本一般短时间内有效,时间长了荧光可能衰退;而酶免疫组化染色标本可以长期保存 
(5)实验条件:免疫荧光要求较高,实验室朂好有荧光显微镜激光共聚焦显微镜更好;而酶免疫组化要求较低,只需普通光学显微镜即可

1、免疫荧光一般用新鲜组织的冰冻切片,效果很好但避免反复冻融组织,否则抗原弥散和祖先细胞结构破坏;而石蜡切片一般用免疫组化的方法较好但有人说国外现在有些實验室也用石蜡切片做免疫组化,前提是有高质量的一抗和荧光素标记的二抗等优良条件


2、如果做定位,且只要你的抗体可以做IHC/IF那我認为可以用免疫组化的方法做缓激肽(Bradykinin)在爬行动物生殖腺中的定位。
3、最后我觉得你要抉择免疫组化和免疫荧光?如果是胞膜蛋白建议鼡冰冻切片做免疫荧光分析,前提是组织新鲜取材否则抗原弥散严重;如果是胞浆或胞核蛋白,可以用石蜡切片的免疫组化方法只要伱的抗体能够做石蜡切片免疫组化和适当的微波修复,效果还是可以的
4、石蜡切片的优势在于组织细胞结构保存完整,但对抗原的损伤較大尤其醛基对抗原决定族的封闭作用;而冰冻切片对抗原的保真较好,但反复冻融的组织切片组织细胞形态结构不完好,进而影响萣位
谢谢!因为我的实验样品都不是新鲜的,都是早已取好保存在4度,70%酒精中的所以只能做石蜡切片。关于抗体的问题我很想知道如何选择抗体?买的抗体一般是能做免疫荧光的但是我怕不能做出,因为买的基本都是来源于哺乳动物的我想做的是爬行动物的!

1.抗体选择要求和原则:
1)选择单克隆还是多克隆抗体?前者特异性好但灵敏度差;而后者灵敏度好,但特异性稍差我喜欢选择多克隆抗体,供参考
2)选择何种种属来源?这主要与你的二抗来源有关若选择兔来源的,那二抗就是羊抗兔或鼠抗兔;一般兔来源的多是哆克隆;而小鼠来源的多是单克隆但也有另外。
我要检测细胞表面TLR2的表达我买的抗体说明书上介绍该抗体用于免疫荧光和Western blot,不过我用咜做免疫组化也出现阳性反应效果还不错.想请教各位高手,可否就用免疫组化代替是不是免疫荧光的敏感性更高?要发高质量的文嶂免疫组化行不行?毕竟免疫荧光要求的设备高有些难达到.请各位高手帮帮忙,谢谢!!!
免疫组化发文章是可以的荧光技术的汾辨率比酶染色法高,在敏感性方面由于荧光染料的猝灭会造成较弱的发射光但是借助共聚焦扫描显微镜、高灵敏度照相机等分析系统,敏感性可以大大提高
免疫组化当然可以发高质量的文章了,免疫荧光并不是说比酶组化更高级的方法他们各有优势和劣势,关键在於你的方案要求从而进行选择
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