求助蛋白银工笔画牡丹染色步骤的步骤

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联系人:张经理
邮 编:201100
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碱性刚果红染色液(淀粉染色)
脂肪染色液(苏丹111染色液)
DNA和RNA染色液(MGP)
核仁组成区相关蛋白银染色液
基底膜银染色液
肥大细胞染色液
嗜银颗粒染色液
纤维素染色液
含铁血黄素染色液(普鲁士兰)
Mallory磷钨酸苏木素染色液
弹力纤维染色液
胶原纤维VG染色液
新型隐球菌.霉菌染色液
吉姆萨染色液
瑞氏染色液
革兰氏细菌染色液
抗酸杆菌染色液
胃幽门螺杆菌双色染色液
胃幽门螺杆菌Leung-Gibbon氏染色液
AB-PAS肠化生粘液染色液-PAS
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AD脑片内的SP,神经纤维缠结常用什么方法染色(光镜),请高手指点,先谢了
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两种经典的染色方法:Bodian染色,显示tangles:BODIAN(石蜡切片)day 11、脱蜡,下行(100%——70%酒精)。2、蒸馏水洗3次。3、1%蛋白银溶液,37度,过夜(17——21小时)。day 24、蒸馏水洗3次。5、对苯二酚溶液(新配置)10分钟。6、蒸馏水洗3次。7、1%氯化金溶液2-5分钟。8、双蒸水洗3次。9、1.5%草酸溶液(新配置)5分钟(至切片发灰)。10、蒸馏水洗3次。11、5%硫代硫酸钠溶液(新配置)固定5-10分钟。12、蒸馏水洗三次。13、脱水、封片。溶液的配制:1、蛋白银溶液的配制将约10克铜丝铺在染色缸的底部,将一克蛋白银倾洒在预热到约60-70度的双蒸水中,不要搅拌。。2、对苯二酚溶液的配制1克对苯二酚加入100毫升双蒸水中,溶解后加入5毫升40%甲醛。3、1%氯化金溶液的配置1克氯化金加入到100毫升双蒸水中,溶解后加入450微升冰醋酸。4、1.5%草酸溶液的配置
草酸1.5克加双蒸水100毫升,充分溶解。5、5%硫代硫酸钠的配置
5克硫代硫酸钠加100毫升双蒸水,充分溶解。Bielschowsky method(modified)既可显示SP又可显示NFT试剂配制:1、
氨银乙醇液20%硝酸银水溶液30ml中加入20ml无水乙醇,混合;加氨水,出现沉淀后继续加氨水直至沉淀完全溶解;继续加氨水1-2ml;过滤三次(器材必须非常清洁);置于棕色瓶中避光保存。2、
5%硫代硫酸钠固定液5g硫代硫酸钠,溶于100ml双蒸水中,避光保存。实验步骤1、
将已在37度恒温箱中的切片,二甲苯-70%脱蜡及脱水。2、
双蒸水清洗三次。3、
2-4%硝酸银水溶液中37度避光浸银30min。4、
倾去硝酸银水溶液,双蒸水清洗三次。5、
10%甲醛水溶液还原5min至切片呈微黄色。6、
双蒸水清洗三次。7、
擦干切片背面及组织周围水分,一次5片置于湿盒中。8、
滴加氨银乙醇液5分钟,每片200ul。9、
擦去组织周围及背面氨银液。10、8%甲醛水溶液中浸泡,注意转动切片,到黄色不再加深。11、蒸馏水清洗三次。12、 重复7、8、9、10步骤2-3次,直到显微镜下可清晰观察到斑块为止。如染色过浅可继续重复;染色过重可用冰醋酸褪色。13、蒸馏水清洗5min。14、脱水及透明,封片。第二种方法由叶伟修正,操作有点繁,但可以用。网上具体有不同的方法,可搜一下。
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SP老年斑一般用刚果红染色,也可以用硝酸银染色。NFT一般用硝酸银染色。老年斑的染色方法是:Highman甲醇刚果红染色法1.甲醇刚果红染液: 刚果红 0.5 g 甲醇 80 ml 甘油 20 ml2.碱性乙醇分化液: 氢氧化钾 0.2 g 80%乙醇 100 ml染色步骤:1. 切片脱蜡至水2. 甲醇刚果红染液染10~20分钟3. 用碱性乙醇分化液分化数秒4. 水洗5. 苏木素复染2分钟6. 水洗7. 脱水,透明,封固结果:淀粉样物呈桔红色。
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lonkery SP老年斑一般用刚果红染色,也可以用硝酸银染色。NFT一般用硝酸银染色。老年斑的染色方法是:Highman甲醇刚果红染色法1.甲醇刚果红染液: 刚果红 0.5 g 甲醇 80 ml 甘油 20 ml2.碱性乙醇分化液: 氢氧化钾 0.2 g 80%乙醇 100 ml染色步骤:1. 切片脱蜡至水2. 甲醇刚果红染液染10~20分钟3. 用碱性乙醇分化液分化数秒4. 水洗5. 苏木素复染2分钟6. 水洗7. 脱水,透明,封固结果:淀粉样物呈桔红色。非常感谢!
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要染早期的斑快可用淀粉样蛋白的抗体来染
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hzzhu 要染早期的斑快可用淀粉样蛋白的抗体来染谢谢,又学了一招。
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请问如果不清楚切片中是否含有β-amyloid形成的斑块时,应该选用这两种方法中的哪种呢?
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淀粉样蛋白的抗体当然特异性更好,刚果红染色更加简单经济。常规来说,如果你的切片的斑块位于海马,在刚果红染色下呈现砖红色斑块,周围有神经元细胞环绕,应该能够断定是老年斑了 。
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我在染色的过程中,甲醇刚果红染色之后,进入“碱性乙醇”分化数秒钟,为什么镜下的背景色非常深啊?一片红染,是不是因为分化时间不够啊?我看了不少文献,一般都是几秒钟的分化,可是我却无法达到别人文献的染色效果啊?请教高然赐教!谢谢!^_^
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草酸1.5克加双蒸水100毫升,充分溶解。5、5%硫代硫酸钠的配置
5克硫代硫酸钠加100毫升双蒸水,充分溶解。Bielschowsky method(modified)既可显示SP又可显示NFT试剂配制:1、
氨银乙醇液20%硝酸银水溶液30ml中加入20ml无水乙醇,混合;加氨水,出现沉淀后继续加氨水直至沉淀完全溶解;继续加氨水1-2ml;过滤三次(器材必须非常清洁);置于棕色瓶中避光保存。2、
5%硫代硫酸钠固定液5g硫代硫酸钠,溶于100ml双蒸水中,避光保存。实验步骤1、
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大家好!我在暨大药学院神经药理室Bielschowsky改良法染色a.5μm厚石蜡切片脱蜡至水洗;入20%硝酸银水溶液内,置37℃温箱内避光浸染25~35分钟;水洗2~3分钟;b.10%甲醛液还原数秒钟至切片呈黄色为止;蒸馏水洗3~5分钟;c.氨银液(配置:20%硝酸银水溶液30ml与无水酒精20ml混合后再滴加入浓氨水,直至形成的棕色沉淀刚刚溶解后再滴入5滴浓氨水:过滤备用)滴染20~40秒;10%甲醛再次还原1~2分钟;蒸馏水洗5分钟;d.5%硫代硫酸钠水溶液固定3~5分钟;酒精系列脱水;二甲苯透明,中性树胶封固。本人试过,绝对有效,但要掌握好时间,以控制颜色深浅。E-mail QQ5350877
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我用了Bielschowsky method,可是背景颜色很深,呈黄棕色,应该用什么方法减轻呢?还有,我是新手,不知道染好的病变是什么样的,请几位前辈指点,最好有图片。谢谢啦!E-mail:QQ:
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我觉得用A-BETA抗体做组化染色,是最有说服力的!但是这个与你的模型建立和抗体的试剂来源有很大关系!而干果红染色最不好处理的就是分化的时间!
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5%硫代硫酸钠固定液为什么要配?Bielschowsky method(modified)步骤里根本就没有用到的
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您好,请问在刚果红染色的过程中为什么需要碱性乙醇分化呢?
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